LLPS and DDS

先週はCBIの「液-液相分離(LLPS)と創薬」というセミナーを聞いてました。

感想としては「創薬との距離感相当ありますなぁ」という感じでした。完全に'Key and Lock'のコンセプトから外れてるし、天然変性タンパク質にこのコンセプトで干渉しようとするのもかなりハードル高そうに感じました。

どちらかというと、DDSの手法を用いて治療コンセプトを証明していくような方が自然なのかなぁと。オルガネラターゲティングとかの細胞内の局在コントロールみたいな。

ProductName 相分離生物学
東京化学同人 / ¥3,520 (2019-08-02)

なんとなくこれから求められていく治療コンセプトが、もっと上手に生体をハックしていく方向にシフトしていくのかなぁと。そうなってくると、分子生物学の知識がますます求められていくのだけど、それを理解するためには物理化学、化学も精通してないといけないという(LLPSなんて化学だしねぇ、でも解いているのは生物の問題という)。

ハードモードに突入するんでしょうかね?

エンドサイトーシスがよくわからない

13章を再読していた。

ProductName 細胞の分子生物学
ニュートンプレス / ¥19,800 (2010-01T)

肉じゃがとモダリティと私

いつもの産直詣でをしたところ、ちょうど出始めの新じゃがいもが手に入ったので肉じゃがを作ってみた。

作り方は至って簡単で、

新じゃがと豚バラを塊のまま蒸し器に放り込んで1時間以上放置。その後適当にザクザク切って片栗粉でとろみをつけただし醤油餡を回しかける

この肉じゃがの作り方の気に入っているところはオーソドックスな煮るタイプの肉じゃがと異なり、蒸していることつまり単に具材でなく調理プロセスという枠組みを再解釈しているところだ。

で、モダリティの話。

昨今のモダリティの議論は低分子から高分子といった具材に限定しているように思う。要するに「牛肉を豚肉に変えてみた」とか「砂糖の代わりにスプライトを入れてみました(これはこれで美味いw)」とか。

本当のモダリティとか、イノベーションっていうのはやっぱり枠組みを再考することでしか生まれないんじゃないかなぁと思いつつ肉じゃがを頂いたのであった。

ProductName 小山裕久の日本料理で晩ごはん
朝日新聞社 / ¥51 (2001-10T)

pygamessがTD-DFTとNMR計算をサポートしました

なんとなくこの本の15章をやりたくなったので、朝からゴニョゴニョしてた。色々できたのでバージョン上げておいた。

TD-DFT

データはおなじみのPubchemQCからダウンロードしてきてopenbabelでmolファイルにコンバートしたものを利用。

>>> from pygamess import Gamess
>>> from rdkit import Chem
>>> m = Chem.MolFromMolFile("examples/methyl_yellow.mol", removeHs=False)
>>> g = Gamess()
>>> g.dft_type("b3lyp", tddft=True)
>>> g.basis_sets("6-31G*")
>>> r = g.run(m)
>>> r.uv_spectra # (exitation ev, oscillator strength)

NMR spectra

これは時間がかかった(2020 MBAで30分以上)

>>> from pygamess import Gamess
>>> from rdkit import Chem
>>> m = Chem.MolFromMolFile("examples/C=CCBr.mol", removeHs=False)
>>> g = Gamess(num_cores=1) # PARALLEL EXECUTION IS NOT ENABLED.
>>> g.basis_sets("6-31G*") 
>>> g.run_type("nmr")
>>> r = g.run(m)
>>> r.isotropic_shielding

独習量子化学計算について

わかりやすくて良い本だった。ケミストだったら本書に沿って一通り手を動かしておけば、後々役に立つのではないかと思った。

こっちはいわゆるクックブックみたいな感じ

Free Ligand 1D NMR Conformational Signatures To Enhance Structure Based Drug Design

This was a very interesting paper.

The correlation of kon with free ligand preorganization implies 1D NMR signatures can augment structure−kinetic relationships; when kon is optimized by highly populated bioactive states, potency will be driven by koff.

Storing GAMESS calculation results in RDKit Chem object

Japan is under a state of emergency for the third time, which forced me to do self-quarantine. After all, my five days of GW holidays were spent developing the pygamess library.

This is an example of storing GAMESS calculation results into RDKit's Chem object. I will calculate the two molecules, ethane, and ethanol, to export as an SDF file later.

>>> from pygamess import Gamess
>>> from pygamess.utils import rdkit_optimize
>>> from rdkit import Chem
>>> ethane = rdkit_optimize("CC")
>>> ethanol = rdkit_optimize("CCO")
>>> g = Gamess()
>>> g.run_type("optimize")
>>> ethane_result = g.run(ethane)
>>> optimized_ethane = ethane_result.mol
>>> ethanol_result = g.run(ethanol)
>>> optimized_ethanol = ethanol_result.mol

Orbital energies and dipole moments including HOMO and LUMO energies are stored in the object. Each atom is also assigned a mulliken charge/lowdin charge.

>>> optimized_ethane.GetProp("HOMO")
'-0.46029999999999999'
>>> optimized_ethane.GetProp("LUMO")
'0.65559999999999996'
>>> optimized_ethane.GetProp("dipole_moment")
'1.9999999999999999e-06'
>>> optimized_ethane.GetProp("orbital_energies")
'-11.0355 -11.0352 -0.981 -0.8121 -0.572 -0.572 -0.4717 -0.4603 -0.4603 0.6556 0.6556 0.687 0.737 0.7814 0.7893 0.7893'
>>> for a in optimized_ethane.GetAtoms():
...   print("{}:\t{:.4f}".format(a.GetSymbol(), float(a.GetProp("mulliken_charge"))))
... 
C:  -0.1748
C:  -0.1748
H:  0.0583
H:  0.0583
H:  0.0583
H:  0.0583
H:  0.0583
H:  0.0583

Finally, I'll export the object to SDF.

>>> optimized_mols = [optimized_ethane, optimized_ethanol]
>>> w = Chem.SDWriter('test.sdf')
>>> for m in optimized_mols:
...   w.write(m)
... 
>>> w.close()

Looking at the exported SDF, we can see these results are persisted.

$ cat test.sdf
     RDKit          3D

  8  7  0  0  0  0  0  0  0  0999 V2000
   -0.7687    0.0082   -0.0152 C   0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0
    0.7687   -0.0082    0.0152 C   0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0
   -1.1742   -0.1016    0.9863 H   0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0
   -1.1352    0.9432   -0.4285 H   0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0
   -1.1499   -0.8048   -0.6260 H   0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0
    1.1499    0.8048    0.6260 H   0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0
    1.1742    0.1016   -0.9863 H   0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0
    1.1352   -0.9432    0.4285 H   0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0  0
  1  2  1  0
  1  3  1  0
  1  4  1  0
  1  5  1  0
  2  6  1  0
  2  7  1  0
  2  8  1  0
M  END
>  <total_energy>  (1) 
-78.306179626800002

>  <HOMO>  (1) 
-0.46029999999999999

>  <LUMO>  (1) 
0.65559999999999996

>  <nHOMO>  (1) 
-0.46029999999999999

>  <nLUMO>  (1) 
0.65559999999999996

>  <dipole_moment>  (1) 
1.9999999999999999e-06

>  <dx>  (1) 
-0

>  <dy>  (1) 
-1.9999999999999999e-06

>  <dz>  (1) 
0

>  <orbital_energies>  (1) 
-11.0355 -11.0352 -0.981 -0.8121 -0.572 -0.572 -0.4717 -0.4603 -0.4603 0.6556 0.6556 0.687 0.737 0.7814 0.7893 0.7893

>  <atom.dprop.mulliken_charge>  (1) 
-0.174764 -0.174764 0.058255000000000001 0.058255000000000001 0.058254 0.058255000000000001 0.058255000000000001 0.058255000000000001

TODO: Add GAMESS calculation conditions as attributes, like "HF/6-31G**".

getGEOで取得した後、不要なサンプルを除去する

とりあえず、ノーマライズされたデータをサクサク再解釈できればいいので、getGEOから。これでとってきたデータに不適切なサンプルが混じったりすることがあるので、最初にサクッと除きたい

gse <- getGEO("GSE138458")
removes <- c("GSM4109031", "GSM4109192", "GSM4109193", "GSM4109194", "GSM4109223", "GSM4109271")
gse <- gse[,-which (colnames(gse) %in% removes)]

とやれば綺麗なデータセットになり嬉しい。

RでGEOのデータ解析チュートリアルをやってみた

朝からQM関連の論文読みまくってちょっと疲れたので写経してみた。Rは作図が楽だし大抵きれいに描いてくれるから良いですよね。

このチュートリアルは大変わかりやすいですが、dplyrとかlimmaはわかっている前提なので別途他のドキュメントで保管する必要があるかもしれないです。

それから、写経して気づいたんですがvolcano plotのとこ多分こうだと思います。

full_results %>% 
+     mutate(Significant = adj.P.Val < p_cutoff & abs(logFC) > fc_cutoff ) %>% 
+     mutate(Rank = 1:n(), Label = ifelse(Rank < topN, Symbol,"")) %>% 
+     ggplot(aes(x = logFC, y = B, col=Significant,label=Label)) + geom_point() + geom_text_repel(col="black")

GSE33126

一通りやったら、YouTubeにもう少し複雑な例を同じ流れでやっている動画があるのでみると更に理解が深まると思います。

このタイミングでまたバイオインフォマティクスにコミットしなきゃならんのかよーとか思っていたけど、実際やってみると色々と新しい発見もあるし生物学はやっぱり面白いですね。

独習 Pythonバイオ情報解析はPythonでシングルセル解析をやりたい人が読めば良いと思う

シングルセル解析をPythonでやりたい人には色々と役に立つことが書いてあると思います。私にとっては7, 10-12章が良かったです。1章から6章はPythonとかPandasの使い方なのでスキップしました。

scanpyの使い方が気になっていたのですが、付録Bに10ページくらいの解説だったけど、もう少しページを割いてもらえると嬉しかったかも。まぁオフィシャルドキュメント読めばいいんだろうけど。

全体的に満足な内容でしたが、

  1. リードのトリミング
  2. ゲノム配列のマッピング
  3. マッピングされたリード数の数え上げ

といった部分は割愛されているのでRNA-Seqデータ解析の内容くらいは理解してある必要があるかもしれません。

独習と銘打ってありますが、Pythonにある程度なれていないとハマるかもしれないなぁと思いました。本書で動作確認したPythonやCondaのバージョンとか各ライブラリのバージョンが明記されていないので、Pyhon3.9.4だとcondaでumap入らなかったりとかconda-forge指定しないといけなかったりとかちょいちょいありました。

それからjupyter notebookを勧めているのにサンプルコードがpyなのは初心者は戸惑うんじゃなかろうかなぁと。ipynb同梱しなかったのはなにか理由があったんですかね?

  • 出力7-24の出力結果間違ってる?
  • 8.1.2 joypy, matplotlib_vennのインストールには -c conda-forgeオプションが必要だった
  • 10.2.3 コンベンショナルな方法で正規化してたが実際はどうするのがいいのか?
  • 11.4 Python3.9.4ではumapをcondaでインストールできなかった。pip混ぜたくないのでスキップした
  • 12.5 SAUCIE後で論文読む

ここで差がつく! 英文ライティングの技術

この本の2章が大変参考になった。

また、この本はまだ半分くらいしか読んでいないが、かなり役に立っている。